第一篇 高中生物新课程中的实验 1
一 高中生物新课程中的实验概况 1
二 实验教学在新课程实施中的意义和作用 6
三 实验教学的类型与开展 9
四 学校实验室和仪器存在的不足 11
第二篇 实验室建设和仪器装备 13
第一章 实验室建设和相关的仪器设备 13
一 适应新课程的实验室布局和改造 13
二 植物组织培养实验室的建设 22
三 中学分子生物学实验室的建设 24
第二章 适应新课程的仪器装备 27
一 适应新课程的试剂与仪器 27
二 数字化教学实验系统简介 39
三 数码显微互动实验系统简介 43
第三篇 实验室技术 51
第一章 显微制片技术 51
一 切片标本 51
二 装片标本 57
三 涂片标本 58
一 微生物学研究的概况 61
第二章 微生物实验技术 61
二 实验室常用的消毒灭菌方法 62
三 培养基的种类 64
四 培养基的配制 66
五 常用微生物培养基配方 66
六 常用的接种工具 68
七 微生物的分离、接种与培养 69
八 菌种保藏 70
第三章 植物组织培养技术 71
一 植物组织培养的概念和原理 71
二 植物组织培养的历史 72
三 植物组织培养的应用 74
四 培养基的成分及配制 76
五 儿种常用培养基的配方及其特点 78
六 常用激素的溶解方法 81
七 无菌操作技术 82
八 外植体褐变及其预防措施 84
第四章 细胞组分分离技术 86
一 离心技术 86
二 层析技术 89
三 电泳技术 94
第五章 PCR技术 101
一 PCR技术的基本原理 101
二 PCR技术的特点 102
三 PCR反应体系 102
四 PCR反应条件的选择 104
五 PCR扩增产物的分析 105
六 PCR技术的应用 106
第六章 核酸分子杂交技术 108
一 核酸杂交的基本理论 108
二 核酸探针及其标记 109
三 核酸分子杂交的基本步骤 111
四 核酸分子杂交的类型与应用 112
五 核酸分子杂交反应条件及参数的优化 114
第四篇 实验案例汇编 115
第一章 基础实验 115
实验一 使用高倍显微镜观察几种细胞 115
实验二 细胞膜的制备 119
实验三 叶绿体的分离提取 120
实验四 探究植物细胞的失水和吸水 122
实验五 过氧化氢酶活性的研究 124
实验六 利用传感器探究酵母菌的呼吸方式 129
实验七 利用传感器探究光照对植物光合作用的影响 131
实验八 探究生长素类似物的浓度对植物生根的影响 133
实验九 培养液中酵母菌种群数量的变化 135
第二章 拓展实验 140
实验一 植物组织中自由水与结合水含量的测定 140
实验二 温度对植物呼吸速率影响的研究 143
实验三 观测玉米茎基色的变化——验证分离规律 145
实验四 探究玉米茎基色的分离规律 149
实验五 紫外线诱导细菌基因突变 151
实验六 温度对微生物生长的影响 156
实验七 几种微生物对酸碱环境耐受性的测定 157
实验八 土壤中自生固氮菌的稀释分离培养和计数 159
实验九 水稻种子愈伤组织的诱导与分化 160
实验十 蝴蝶兰的组织培养 163
实验十一 微茎尖脱毒培养 164
实验十二 洋葱细胞DNA的粗提取和鉴定 167
实验十三 核酸的电泳 168
实验十四 核酸分子杂交 170
综合实验 转基因大豆的鉴定 173
附录 中学生物探究实验室安全规范 186